HEMOCULTURA AUTOMATIZADA [CT-HMA]
Instruções para paciente
ÚLTIMA ATUALIZAÇÃO: 24/11/2011 09:13:51PALAVRAS CHAVES
Cultura de sangue
ÁREA
MICROBIOLOGIA
CONDIÇÕES
- Sangue total (frasco próprio de hemocultura convencional).
VOLUME RECOMENDÁVEL
- Adulto: 5 a 10 mL em frasco de hemocultura de 90 mL.
- Criança: 1 a 5 mL em frasco de hemocultura de 45 mL.
QUESTIONÁRIO
- Informar se está em uso de antimicrobianos.
INSTRUÇÕES
- Preferencialmente não estar em uso de antimicrobianos.
COLETA
- Colher em frascos específicos para hemocultura convencional,
HEMOPROV I (fornecido pelo HP) ou HEMOCULT.
- Não coletar em ambiente aberto, com corrente de ar;
- Lavar e secar as mãos cuidadosamente;
- Selecionar o local da punção. Caso necessário, utilizar o garrote.
Após seleção da veia, afrouxar o garrote;
- Retirar a tampa de proteção do meio de cultura, sem remoção total do
anel de alumínio que protege o frasco, e desinfetar a tampa de
borracha com algodão e álcool etílico a 70%, colocar uma gaze estéril
protegendo a tampa, enquanto é feita a assepsia do local de punção.
- Limpar o local da punção com algodão embebido em álcool etílico 70%, em círculos
concêntricos (do centro para as bordas), sem voltar com o algodão para o centro.
- Em seguida, limpar o local da punção com algodão embebido em
clorexidina 2% em círculos concêntricos (conforme descrito no item
acima).
- Esperar secar para que o antisséptico exerça seu efeito no local.
- Retirar a clorexidina com algodão embebido em álcool etílico 70% .
- Deixar secar completamente (de 30 segundos a 2 minutos). Não
assoprar, não abanar e não colocar nada no local;
- Após limpar o local, não mais tocá-lo;
- Trocar as luvas, garrotear e puncionar, sem apalpar a veia;
- Se coleta for feita com scalp, posicionar o frasco de hemocultura
abaixo do local da punção e na posição vertical, observando a
quantidade de sangue que está fluindo no frasco.
- Se coleta for feita com seringa e agulha, transferir o sangue
imediatamente para o frasco de hemocultura sem trocar a agulha. Se
houver suspeita de contaminação, trocar a agulha imediatamente antes
de transferir o sangue para o frasco.
- Homogeneizar os frascos cuidadosamente (lentamente) por inversão.
- O intervalo entre a coleta e o número das amostras varia de acordo
com a suspeita clínica, devendo preferencialmente ser especificado pelo
médico. Quando não especificado os tempos, colher com espaço de 30
minutos cada amostra, conforme abaixo:
. 1 amostra: colher em um braço 1 frasco de hemocultura convencional.
. 2 amostras: colher 1 frasco de hemocultura e, após o intervalo de 30
minutos, colher a outra amostra no outro braço.
. 3 amostras: colher 1 frasco de hemocultura convencional e colher as
outras 2 amostras 30 e 60 minutos após a primeira coleta, alternando
os braços a serem coletados.
- Quando houver solicitação de hemocultura para anaeróbios
especificada, usar também o frasco próprio para anaeróbios. Neste caso
proceder a coleta simultaneamente com o frasco convencional na
primeira punção.
- As principais dificuldades deste exame consistem em se definir se o
agente isolado é ou não contaminante. Portanto, os cuidados
referentes ao processo de assepsia devem ser rigorosamente obedecidos.
- A sensibilidade do exame esta diretamente relacionada ao volume de
sangue colhido. Quanto maior o volume da amostra, maior a
possibilidade de se isolar a bactéria.
- A especificidade aumenta quando as coletas são feitas em sítios
diferentes.
- O melhor índice de recuperação bacteriana ocorre quando a coleta é
realizada 1 hora antes do pico febril.
- Na ausência de clorexidina 2% para realizar a assepsia, pode-se
utilizar álcool iodado a 2%.
- Para os casos de hipersensibilidade ao iodo, utilizar a clorexidina
ou fazer uma criteriosa assepsia com álcool (etilico ou isopropilico)
a 70%.
CONSERVAÇÃO
- Laboratórios conveniados: Enviar exclusivamente em frasco específico para hemocultura,
até 2 dias em temperatura ambiente.
CRITÉRIOS DE REJEIÇÃO
- Amostra enviada em frasco não apropriado para hemocultura.
- Amostras de sangue coletadas apenas em anticoagulante.